Fitorreguladores na calogênese e rizogênese em Eugenia involucrata

Autores

DOI:

https://doi.org/10.4336/2020.pfb.40e201901908

Palavras-chave:

Biotecnologia vegetal, Organogênese, Propagação vegetativa

Resumo

Este trabalho objetivou avaliar o efeito de fitorreguladores na calogênese e rizogênese em discos foliares de Eugenia involucrata. Foram testadas, em dois experimentos, combinações de ácido naftalenoacético (ANA) e 6-benzilaminopurina (BAP) e de 2,4-diclorofenoxiacético (2,4-D) e BAP. Aos 45 dias de cultivo todos os tratamentos formaram calos, principalmente naqueles em que foram empregados ANA isolado e, também, combinado com BAP, bem como 2,4-D e BAP (5:5 e 10:10 µM). Apenas ANA isolado (10 µM) induziu  rizogênese. Aos 90 dias de cultivo pôde-se perceber  melhor o efeito dos fitorreguladores, observando-se que 2,4-D e BAP (5:5 e 10:10 µM) favoreceram a calogênese, enquanto para rizogênese o melhor tratamento foi com 10 µM de ANA. É possível mediar processos de desdiferenciação e rediferenciação celular a partir de discos foliares de Eugenia involucrata.

Downloads

Não há dados estatísticos.

Biografia do Autor

Diego Pascoal Golle, Universidade de Cruz Alta

http://lattes.cnpq.br/4193267565056836

Lia Rejane Silveira Reiniger, Universidade Federal de Santa Maria

http://lattes.cnpq.br/5739294882585391

Charlene Moro Stefanel, Universidade Federal de Santa Maria

http://lattes.cnpq.br/7120227461634601

Caetano Miguel Lemos Serrote, Universidade Federal de Santa Maria

http://lattes.cnpq.br/5001960650991346

Referências

Alencar, D. R. C. Calogênese e regeneração in vitro de brotos a partir de raiz, entrenó e disco foliar de Brosimum gaudichaudii Tréc. (Moraceae). Revista Eletrônica de Biologia, v. 8, n. 3, p. 288-298, 2015.
Aragão, A. K. O. et al. O efeito do BAP (6-benzilaminopurina) sobre a indução de brotos em explantes de pau-brasil. Cerne, v. 17, n. 3, p. 339-345, 2011. http://dx.doi.org/10.1590/S0104-77602011000300007.
Backes, P. & Irgang, B. Árvores do Sul: guia de identificação e interesse ecológico. Porto Alegre: Paisagem do Sul, 2009. 325 p.
Baque, M. A. et al. Induction mechanism of adventitious root from leaf explants of Morinda citrifolia as affected by auxin and light quality. In vitro Cellular and Developmental Biology – Plant, v. 46, n. 1, p. 71–80, 2010. https://doi.org/10.1007/s11627-009-9261-3.
Carneiro, F. S. et al. Embriogênese somática em Agave sisalana Perrine: indução, caracterização anatômica e regeneração. Pesquisa Agropecuária Tropical, v. 44, n. 3, p. 294-303, 2014. http://dx.doi.org/10.1590/S1983-40632014000300005.
Carvalho, M. A. F. et al. Indução, análises morfológicas e ultraestruturais de calos de maracujazeiro nativo. Ceres, v. 62, n. 4, p. 340-346, 2015. http://dx.doi.org/10.1590/0034-737X201562040002.
Carvalho, P. E. R. (Ed.). Espécies arbóreas brasileiras. Brasília, DF: Embrapa Informação Tecnológica; Colombo: Embrapa Florestas, 2014. 634 p. (Coleção espécies arbóreas brasileiras, v. 5).
Ferreira, D. F. Sisvar: a computer statistical analysis system. Ciência e Agrotecnologia, v. 35, n. 6, p. 1039-1042, 2011. http://dx.doi.org/10.1590/S1413-70542011000600001.
Fett-Neto, A. G. et al. Distinct effects of auxin and light on adventitious root development in Eucalyptus saligna and Eucalyptus globulus. Tree Physiology, v. 21, n. 7, p. 457– 464, 2001. http://dx.doi.org/10.1093/treephys/21.7.457.
Grattapaglia, D. & Machado, M. A. Micropropagação. In: Torres, A. C. et al. Cultura de tecidos e transformação genética de plantas. Brasília, DF: Embrapa-SPI: Embrapa–CNPH, 1998. p. 183-260.
Lorenzi, H. (Ed). Árvores brasileiras: manual de identificação e cultivo de plantas arbóreas nativas do Brasil. 3. ed. Nova Odessa: Instituto Plantarum, 2009. 384 p. v. 2.
Ma, X. Y. et al. Leaf callus induction and suspension culture establishment in lychee (Litchi chinensis Sonn.) cv. Huaizhi. Acta Physiologiae Plantarum, v. 31, n. 2, p. 401-405, 2009. http://dx.doi.org/10.1007/s11738-008-0223-x.
Morais, T. P. et al. Reguladores de crescimento vegetal no cultivo in vitro de Mentha x Piperita L. Revista Brasileira de Plantas Medicinais, v. 16, n. 2, supl. I, p. 350-355, 2014. http://dx.doi.org/10.1590/1983-084X/13_017.
Murashige, T. & Skoog, F. A revised medium for rapid growth and bio assays with tobacco tissue cultures. Physiologia Plantarum, v. 15, n. 3, p. 473–497, 1962. https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x.
Pacurar, D. I. et al. Auxin is a central player in the hormone cross-talks that control adventitious rooting. Physiologia Plantarum, v. 151, n. 1, p. 83-96, 2014. https://doi.org/10.1111/ppl.12171.
Pasquali, G. & Zanettini, M. H. B. Transgênese florestal. In: BORÉM, A. Biotecnologia florestal. Viçosa, MG: Ed. UFV, 2007. p. 317-334.
Pereira, D. M. S. et al. Induction and morphological and biochemical characterization of Hyptis leucocephala (Lamiaceae) calluses. Sitientibus série Ciências Biológicas, v. 12, n. 1, p. 151-156, 2012. https://doi.org/10.13102/scb124.
Pinto, D. L. P. et al. Ploidy stability of somatic embryogenesis-derived Passiflora cincinnata Mast. plants as assessed by flow cytometry. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, v. 103, n. 1, p. 71-79, 2010. https://doi.org/10.1007/s11240-010-9756-y.
Pinto, D. L. P. et al. Somatic embryogenesis from mature zygotic embryos of commercial passionfruit (Passiflora edulis Sims) genotypes. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, v. 107, n. 3, p. 521-530, 2011. https://doi.org/10.1007/s11240-011-0003-y.
Rocha, D. I. & Dornelas, M. C. Alternative induction of de novo shoot organogenesis or somatic embryogenesis from in vitro cultures of mature zygotic embryos of passion fruit (Passiflora edulis Sims) is modulated by the ratio between auxin and cytokinin in the medium. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, v. 120, n. 3, p. 1087-1098, 2015. https://doi.org/10.1007/s11240-014-0663-5.
Rosado, L. D. S. et al. Aspectos do cultivo in vitro do manjericão cv. Maria Bonita (Ocimum basilicum L.). Plant Cell Culture & Micropropagation, v. 5, n. 2, p. 71-78, 2009.
Rossato, M. et al. Multiplication and in vitro rooting of Campomanesia adamantium Camb. Plant Cell Culture & Micropropagation, v. 11, n. 2, p. 70-77, 2015.
Santos, B. R. et al. Indução de calos friáveis em explantes foliares de salix (Salyx humboldtiana Willd). Ciência Rural, v. 35, n. 3, p. 510-514, 2005. http://dx.doi.org/10.1590/S0103-84782005000300004.
Shen, X. et al. Assessment of somaclonal variation in Dieffenbachia plants regenerated through indirect shoot organogenesis. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, v. 91, n. 1, p. 21-27, 2007. https://doi.org/10.1007/s11240-007-9273-9.
Silva, M. L. et al. A novel regeneration system for a wild passion fruit species (Passiflora cincinnata Mast.) based on somatic embryogenesis from mature zygotic embryos. Plant Cell, Tissue and Organ Culture, v. 99, n. 1, p. 47-54, 2009. https://doi.org/10.1007/s11240-009-9574-2.
Sorin, C. et al. Auxin and light control of adventitious rooting in Arabidopsis require Argonaute. The Plant Cell, v. 17, n. 5, p. 1343 – 1359, 2005. https://doi.org/10.1105/tpc.105.031625.
Stachevski, T. W. et al. Efeito do meio de cultura na calogênese in vitro a partir de folhas de erva-mate. Pesquisa Florestal Brasileira, v. 33, n. 75, p. 339-342, 2013. https://doi.org/10.4336/2013.pfb.33.75.441.
Taiz, L. et al. Fisiologia e desenvolvimento vegetal. 6. ed. Porto Alegre: Artmed, 2017. 888 p.
Termignoni, R. R. Cultura de tecidos vegetais. Porto Alegre: Ed da UFRGS. 2005. 182 p.
Webster, S. A. et al. Somatic embryogenesis from leaf and zygotic embryo explants of Blighia sapida “cheese” ackee. In Vitro Cellular & Developmental Biology – Plant, v. 42, n. 5, p. 467-472, 2006. https://doi.org/10.1079/IVP2006795.
Werner, E. T. et al. Meios de cultura, reguladores de crescimento e fontes de nitrogênio na regulação da calogênese do pau-brasil (Caesalpinia echinata Lam.). Acta Botânica Brasileira, v. 24, n. 4, p. 1046-1051, 2010. http://dx.doi.org/10.1590/S0102-33062010000400019.

Downloads

Publicado

2020-09-30

Como Citar

GOLLE, D. P.; REINIGER, L. R. S.; STEFANEL, C. M.; SERROTE, C. M. L. Fitorreguladores na calogênese e rizogênese em Eugenia involucrata. Pesquisa Florestal Brasileira, [S. l.], v. 40, 2020. DOI: 10.4336/2020.pfb.40e201901908. Disponível em: https://pfb.cnpf.embrapa.br/ojs-3.2.1-1/index.php/pfb/article/view/1908. Acesso em: 1 dez. 2020.

Edição

Seção

Artigos Científicos